什么是巴氏染色巴氏染色的操作方法
巴氏染色有4個步驟，分別是固定、核染色、胞漿染色和透明，那么你對巴氏染色了解多少呢?以下是由學(xué)習(xí)啦小編整理關(guān)于什么是巴氏染色的內(nèi)容，希望大家喜歡!
巴氏染色的操作方法及注意事項
染色有4個步驟：1、固定;2、核染色;3、胞漿染色;4、透明。
主要達到以下要求：1、核的結(jié)構(gòu)清晰;2、透明度高;3、分色恰當(dāng)。
固定
固定的目的細胞制片的迅速固定是制片過程中關(guān)鍵的一步，否則會影響細胞學(xué)診斷的準(zhǔn)確性。對于不同的標(biāo)本需要不同的固定方法。最為常用的固定方法是95%酒精作為固定液的濕固定法。酒精作為一種脫水劑能夠防止細胞內(nèi)的酶捋蛋白質(zhì)分解而自容，并凝固細胞內(nèi)的物質(zhì)如蛋白質(zhì)、脂肪和糖類等，使其保持與組織生活相仿的成分，從而使細胞各部分，尤其核染色質(zhì)易于著色。對于巴氏染色來說，酒精固定最為重要的。如果酒精濃度不足引起的固定不佳，可造成細胞的人為變化，并可導(dǎo)致假陽性或假陰性的診斷。
1、固定方法濕固定法：作為用95%酒精固定液固定的細胞學(xué)標(biāo)本一定使用濕固定法。制片制備完后，趁標(biāo)本新鮮而又濕潤時，立即放入盛有95%酒精的固定缸內(nèi)。制片在固定液內(nèi)至少保持15-30min。固定時間通常不超過1周。這種制片染色后，顏色鮮艷，結(jié)構(gòu)清晰。如果細胞制片需要送至另一實驗室或郵寄他處染色時，可以固定15min后，把制片取出后立即密封的容器中或者使用甘油防止制片干燥。因為無論固定前或固定后的制片，如果發(fā)生干燥后都會影響染色的效果。
2、固定注意事項固定液的過濾：為了防止細胞污染，凡是使用過的固定液，必須過濾后才能再使用。使用過長的固定液，必須用酒精相對密度計測定，酒精濃度低于90%時應(yīng)該及時更換新液。濕固定的重要性：標(biāo)本再新鮮時及時固定時保證染色效果的重要因素。如蘇木素對細胞核的染色，巴氏染色中胞漿的特殊著色作用，均可因標(biāo)本干燥后固定而大受影響。制片標(biāo)本的郵寄：標(biāo)本再固定15min后取出，立即加甘油數(shù)滴于制片上，裝入密封的小盒中。實驗室在收到標(biāo)本后，先浸入95%酒精中，使甘油溶去，再進行染色。
核染色
1、 蘇木素液浸染時間一般在3-5min，但是必須隨氣溫和染料情況而酌情改變。夏季或放置較久的蘇木素染液容易著色，時間要縮短;冬季或新配制的蘇木素染液和應(yīng)用已久較稀釋的蘇木素液不易著色，時間要延長。在使用蘇木素染色時，一般有2種方法：
1)過染法：首先有意識地進行深染，然后通過鹽酸酸化過程使核染色趨于合適。這種方法能夠在酸化過程中把胞漿內(nèi)黏附多余的蘇木素染料去掉，使胞漿染色更為鮮艷、清晰、多用于黏液多的標(biāo)本。
2)淡染法：在核染色過程中，嚴(yán)格掌握染色時間，使核染色適宜而不用鹽酸酸化，但是胞漿中少量的蘇木素會影響EA染色的質(zhì)量。主要用于黏液少的標(biāo)本，避免在酸化和自 來水沖洗的過程中使細胞成片地脫落。在使用蘇木素染色時，一定要每日進行過濾，否則蘇木素結(jié)晶會影響染色的質(zhì)量。一般蘇木素染液可以使用較長時間，所以每日增加少量新鮮染液即可。
2、堿化堿化亦稱返藍過程，可以使用飽和碳酸鋰或3%氨水堿化，目的使蘇木素及早顯色，時間約數(shù)秒。更重要的是流水沖洗，可使藍色顯的更鮮艷。堿性溶液亦需要充分漂清才不會妨礙下一步的胞漿著色及標(biāo)本制成后的顏色保存。分化和堿化溶液至少每天更換新液。
胞漿染色
胞漿染色在巴氏方法中亦稱為OG—EA染色，它包括橘黃G(OG)和EA兩部分染色。由于橘黃G是一種小分子染料，能夠很快地作用于胞漿，一般染色時間不宜過長，通常1-2min。對于宮頸、陰道上皮中非正常角化細胞和角化型鱗癌細胞的胞漿中都可以出現(xiàn)鮮艷的橘黃色。
封固制片
封固制片對于避免空氣干燥的影響，制片經(jīng)長期存放不褪色是非常重要的。一般使用24mm×50mm或24mm×60mm的蓋玻片，用二甲苯調(diào)配的中性樹膠進行封固。
透明
染色的最后一步是透明，使細胞的色度與細胞的重疊不致影響鏡下檢查。這是在脫水與制片封固之間的一項重要步驟。最常用的透明溶劑使二甲苯，二甲苯的折射率在1.494，載玻片的折射率在1.515，兩者較為匹配。如果二甲苯溶液出現(xiàn)顏色或變得渾濁，一定要更換新液。 巴氏染色操作流程 95%乙醇固定(15min)→清水沖洗多次→蘇木素染液(3-5min)→清水沖洗三次→藍化→95%乙醇漂洗→橙黃染液(1-10s)→95%乙醇漂洗→95%乙醇漂洗→100%乙醇漂洗→EA50(3-5m)→95%乙醇漂洗→95%乙醇漂洗→無水乙醇漂洗→無水乙醇(2min)→二甲苯(2min)→中性樹膠封片。
染色的注意事項
細胞核著色不佳
(1)細胞核著色過淺：
1)鹽酸分化時間過長或蘇木素染液時間過長。需要縮短分化時間或延長堿化時間;每日加入少量新鮮蘇木素染液或重新配制蘇木素液。
2)在固定之前制片干燥。所以對巴氏染色的制片需要嚴(yán)格遵守濕固定的原則。
3)自來水的PH值偏酸性。使用堿性溶液。
(2)細胞核著色過深：
1)鹽酸溶液濃度不夠。適當(dāng)加入幾滴鹽酸以增加濃度。
2)制片用高于95%以上濃度的酒精固定后可以出現(xiàn)染色過深。應(yīng)用95%酒精固定。
細胞漿著色不佳
(1)如果全片內(nèi)胞漿都淡染，則需要延長染色時間或更換新液。
(2)如果胞漿不分色，均為淺紅色。制片在固定前干燥或制片被有大量球菌樣細菌影響胞漿染色。此情況可以適當(dāng)增加染色時間能夠部分糾正不分色狀況。
(3)胞漿染成灰色或紫色，是由于蘇木素染色時間過長或鹽酸分化不佳。經(jīng)過褪色后重新蘇木素可以糾正。
(4)由于標(biāo)本的不同，同樣配方的EA染液可造成偏藍、偏綠和偏紅，對不同的標(biāo)本應(yīng)該使用不同的EA染液。一般認為，EA36和EA50用于婦科標(biāo)本，而EA65或改良EA用于非婦科標(biāo)本。
(5)胞漿不分色的另一重要原因是由于EA染液的PH值不恰當(dāng)所致。如染色為紅色，可以加少許磷鎢酸溶液糾正;如染色均為藍色或綠色，可以加少許飽和碳酸鋰溶液糾正。對于改良EA染液，每100ml染液加入2ml冰醋酸后染色效果更佳;染液使用更持久。
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